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原代組織細(xì)胞的解離是從原代組織上獲取單個細(xì)胞懸液的常用方法是利用酶的解聚作用。盡量縮短用酶處理細(xì)胞的時間，以獲得高的存活率。那么我們該如何解離原代組織細(xì)胞呢？

胰酶：

1.先去除無關(guān)組織，然后用滅菌的解剖刀或剪刀將組織切成3-4mm大小碎塊。通過在不含鈣鎂的平衡鹽溶液進行重懸來清洗組織碎塊。待組織碎塊沉降后去掉上清液。重復(fù)清洗2-3次。

2.將裝有組織碎塊的容器置于冰上，去掉所有上清液。在不含鈣鎂的平衡鹽溶液中加入0.25%胰酶(每100mg組織大約需要1ml 胰酶)。

3.在4℃ 下孵育6-18小時，使低活性的胰酶盡量滲入組織。

4.緩慢倒掉胰酶。在37℃ 下將殘余的胰酶與組織碎塊共同孵育20-30分鐘。

5.向組織碎塊加入溫?zé)岬?培養(yǎng)基，并輕輕地吹吸以分散組織。如果使用無血清培養(yǎng)基。還應(yīng)加入大豆胰酶抑制劑。

6. 用滅菌的不銹鋼網(wǎng)(100-200μm)過濾細(xì)胞懸浮液，直至所有組織*散開。計算細(xì)胞個數(shù)，然后接種細(xì)胞進行培養(yǎng)。

膠原酶：

1.用滅菌的解剖刀或剪刀將組織切成3-4mm大小碎塊。用Hanks平衡鹽溶液(HBSS)將組織碎塊清洗數(shù)次。

2.加入膠原酶(50-200單位/ml膠原酶HBSS)。

3.在37℃ 下孵育4-18小時。加入3mM CaCl2 可以提高解離效率。

4.用滅菌的不銹鋼網(wǎng)或尼龍網(wǎng)過濾細(xì)胞懸浮液，將離散的細(xì)胞和組織片段與大塊的組織碎片分離。如需進一步解離，可向組織片段中加入新鮮的膠原酶。

5.通過離心HBSS清洗細(xì)胞懸浮液數(shù)次。

6.用培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。計算細(xì)胞個數(shù)，然后接種細(xì)胞進行培養(yǎng)。

分散酶：

1.用滅菌的解剖刀或剪刀將組織切成3-4mm大小碎塊。用不含鈣鎂離子的平衡鹽溶液清洗組織碎塊數(shù)次。

2.加入分散酶(0.6-2.4單位/ml分散酶不含鈣鎂的平衡鹽溶液)。

3.在37℃下孵育20分鐘至數(shù)小時。

4.用滅菌的不銹鋼網(wǎng)或尼友網(wǎng)過濾細(xì)胞懸浮液，將離散的細(xì)胞和組織片段與大塊的組織碎片分離。如需進一步解離，可向組織片段中加入新鮮分散酶。

5.通過離心平衡鹽溶液清洗細(xì)胞懸浮液數(shù)次。

6.用培養(yǎng)基重懸細(xì)胞。計算細(xì)胞個數(shù)，然后接種細(xì)胞進行培養(yǎng)。

按以上的方法解聚整原代組織細(xì)胞，我們就可以獲得大量細(xì)胞。